制作激光共聚焦显微镜的样品是一个涉及多个步骤的过程,以下是一个清晰的制作流程,结合了参考文章中的相关信息:
1. 组织采集与固定
采集:根据实验条件和目的采集不同来源的组织。
固定:
液氮冷冻法:新鲜组织采集后,直接放入液氮中保存。
多聚甲醛(PFA)固定法:适用于小鼠、大鼠等实验动物的组织。将组织块置于4% PFA中进行后固定,固定的时间可根据组织块的大小和致密程度调整,如4℃固定过夜或室温1~4 h。
2. 组织保存与预处理
洗涤:用0.01 mol/L PBS缓冲液洗3次,每次10~30 min。
脱水:在20%蔗糖中4℃浸泡1 h以上,待组织块下沉后,即可进行后续步骤。
保存:组织块可置于4℃冰箱保存于20%蔗糖(含0.05% NaN₃)中,一个月内完成切片。
3. 冷冻包埋与切片
冷冻:
气体CO₂冷冻包埋法:将组织块放在滤纸上吸取表面液体,放入样品台的冷冻包埋剂(OCT)中,用CO₂气体迅速冷冻组织样品。
液氮冷冻法:将组织块置于样品台的OCT中,先在液氮中迅速浸提几次,直至样品温度与液氮温度平衡,之后移至冷冻切片机中。
切片:使用冷冻切片机,将组织切成5~15 μm的切片,粘贴于处理过的载玻片上。
4. 免疫荧光抗体标记
切片处理:将冷冻组织切片从-80℃冰箱中取出,室温放置10min,待切片回温并干燥,浸于PBS中10min洗去OCT。
标记:无需Triton处理,即可进行免疫荧光抗体标记,操作步骤与培养细胞反应方法相同。
5. 封片与保存
封片:使用抗荧光淬灭的封片剂封片,以减少荧光信号丢失。
保存:4℃保存,等待观察。
注意事项
样品承载物:如观察贴壁细胞或组织切片,可用普通载玻片和盖玻片;如观察悬浮细胞或悬浮粒子,可用共聚焦显微镜专用的培养皿。
染料选择:根据共聚焦显微镜配备的激光器波长选择荧光染料,避免不同荧光染料的发射波长重叠。
通过遵循以上步骤和注意事项,可以制作出适用于激光共聚焦显微镜的高质量样品。